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鱼类性腺发育及产卵类型研究进展

来源:独旅网
长江大学学报(自科版) 2017年3月第14卷第6期Journal of Yangtze University (Natural Science Edition)

Mar. 2017, Vol. 14 No. 6

• 43 •

[引著格式]徐钢春,鲍明明,杜富宽,等.里类性腺发育及产卵类型研究进展[J].长江大学学报(自科版),2017, 14 (6): 43〜

48.

鱼类性腺发育及产卵类型研究进展

徐钢春,鲍明明,杜富宽,徐跑

'中国水产科学研究院淡水渔业研究中心,农业部淡水渔业和 .种质资源利用重点实验室,江苏无锡24081

[摘要]鱼类的性腺发育是鱼类繁殖的关键,对个体的繁衍生存和种群的延续至关重要。目前,鱼类性腺

发育的研究主要方向包栝对精巢和卵巢结构的深入分析、性腺各个发育期的形态特征描述及时相划分和 影响性腺发育的相关因素阐释。鱼类性腺发育既受自身分泌的性类固醇激素调控,也与环境因子密切相 关。鱼类性腺发育的不同步直接导致了产卵类型的差异,关于产卵类型的划分学术界没有统一标准,但 在其他方面形成共识。水化卵法仍是测算分批繁殖力最为行之有效的手段,产后滤泡法对于评估繁殖频 率收效明显。此外,从血液生化指标的角度同样可以反映卵巢发育水平,其对鲟形目鱼类的性别鉴定具

有较高的准确率。

[关键词]

性腺发育;时相划分;产卵类型;年繁殖力;血液生化指标

S961

[中图分类号][文献标志码]A [文章编号]1673 1409 (2017) 06 0043 06

鱼类是最原始的无脊椎动物,在地球的广阔水域均有分布,其种类之丰富,远超分类地位更高的其 他物种—

两栖类、爬行类、鸟类及哺乳类等。据保守估计,全世界已知的鱼类至少有20000种。虽然

种类繁多、形态各异,但最基本的生理结构保持稳定,生殖系统不会缺位。笔者综述了近年来鱼类性腺 发育及产卵类型的研究进展,以期为后续的深层次研究提供参考。

1鱼类的性腺发育

鱼类完整的生殖系统包括性腺(精巢、卵巢)和生殖导管(输精管、输卵管)。性腺作为生殖系统 的重要组成部分,是鱼类进行繁殖活动的基础,对维持种群的绵延不绝影响深远。关于鱼类性腺发育的 研究多集中在对精巢和卵巢结构的深人分析、不同发育期的形态特征描述和时相划分、影响性腺发育的 内分泌激素作用机理阐释及环境因子探究等方面。鱼类性腺发育的研究主要依靠性腺发育的组织学、组 织化学以及电镜、免疫、分子生物学和离体培养等来实现[1],已取得一系列进展。1.1鱼类精巢发育

雄鱼性腺的研究领域涉及精巢的结构、精子的发生过程及其生理学意义、精巢中生精细胞和体细胞 之间的相互关系、精子发生过程中性激素的调节和组织化学的变化等[2]。鱼类精巢位于鳔的腹面两侧, 多成对出现,黄鳝例外,精巢单一,位于身体右侧[3]。对于精巢的组织结构划分,学界目前存有2种标 准。第一种:N

agaham, [4]和Billard 5]将硬骨鱼类的精巢分为小管型和小叶型,依据的标准是精巢中生

第二种:国内学者孟庆闻等[7]根据硬骨鱼

精细胞的排列方式,大多数鱼类如黄鳝、鲇等均为小叶型[6]

类精巢中精小叶的排列情况,将精巢分为辐射型(鲇形目鱼类等)和壶腹型(包括鲤科、鲑科和绯科鱼 类等)。2种划分模式,第一种应用更广。同组织结构的划分一样,关于精巢的发育分期国内外也存在 多种观点。我国一般按照生殖细胞的出现时间,把硬骨鱼类的精巢发育划分为6个时期,即期[]。

[收稿B期]2016 09 21

[基金项目]公益性行业(农业)科研专顶(201203065);江苏省水产三新工程重大专顶(D2015-14) [作者简介]徐钢春(1979-),男,副研究员,主要从事里类繁育生物学研究,xugc@

I

至见

ffrr.cn。

动物科学2017年3月

1.2鱼类卵巢发育

针对于鱼类卵巢发育的研究,远比精巢发育的研究更为具体细致。其中,卵巢发育时期及卵母细胞 发育时相划分、原始生殖细胞的起源和迁移、卵黄物质的来源及生成过程、滤泡细胞的分期及来源、卵 膜的形成、变化及其在受精过程中的作用等是研究的重点和热门[9]。1.2.1卵巢发育时期及卵母细胞发育时相划分

首先提出卵巢发育分期的是前苏联学者M

efteI[10],他

将鱼类卵巢分为6期,依据的标准为卵巢内

观点的不足。刘筠[]主张鱼类卵巢自

各时相卵母细胞的数量比例。在此基础上,施琼芳等[1]提出了更进一步的观点,即除了数量比例外,还 可以按照不同时相卵母细胞所占的体积进行分期,弥补了 M

efteu

身的组织学特征是划分的重要依据,应以卵细胞成熟等级为标准,结合细胞学及生理学数据进行划分。 目前,虽然关于卵巢分期国内外还有其他不同意见,但绝大多数学者在实际过程中更倾向于M施琼芳及刘筠3派的卵巢分期标准[11]。关于卵母细胞发育时相,国内学者多是沿用M1.2.2原始生殖细胞的起源和迁移

顾名思义,鱼类的原始生殖细胞指的是胚胎发育中出现时间最早的生殖细胞,对它起源的研究经历 了从传统组织学方法向分子生物学手段不断演进的过程。目前有2种观点,分别认为原始生殖细胞起源 于中胚层和起源于内胚层。借助于电镜、组织化学、分子生物学,细胞学等方法,已经弄清楚其迁移的 3种表现方式和2种迁移机制,后续研究正不断深人[11]。1.2.3卵黄物质的来源及生成过程

鱼类的卵黄作为卵母细胞的主要成分,能为胚胎发育提供能量,堪称动力之源。卵黄物质在鱼类中 的表现形式不外乎3种:油滴、卵黄泡和卵黄球[13]。内源性和外源性是硬骨鱼类卵黄生成仅有的2种 途径,具体来说,前者的合成场所是在卵母细胞内,后者则是肝脏,已有的资料显示,以外源性卵黄为 主。杨桂枝等[14]曾证实南方站(SiZwrM1.2.4滤泡细胞的分期及来源

鱼类的滤泡细胞是非生殖细胞,紧紧环绕于卵母细胞外围,通常可以分为7个发育时期。关于其来 源,学者意见不一。一些学者认为滤泡细胞最初源自卵原细胞[15],大部分学者则认为它们来源于卵巢基质细胞[16]。

1.2.5卵膜成分、结构及功能

鱼类的卵膜没有细胞结构,位置在卵母细胞、成熟卵母细胞和正在发育的胚胎组织的外层。施琼 芳[17]认为构成卵膜的主要成分是碳水化合物和蛋白质,已

膜蛋白包含19种氨基酸[18]。依照结构的复杂程度划分,卵膜有初级、次级和三级等类型。普遍的看法 是,浮性鱼卵的卵膜结构简单,只有初级类型,而沉性鱼卵更为复杂,兼具初级、次级乃至三级卵膜等类型[19]。

1.3基于血液生化指标研究鱼类的卵巢发育及性别

形态和组织学观察是研究鱼类卵巢发育的最直接最有效的手段之一,而血液中的部分生化指标,尤 其是(V

P

SioWatowi)

efteu

efteu

的标准进行

划分,而国外学者往往有不同观点,如将线粒体在细胞质中分布情况作为划分依据[12]。

的卵黄生成早期为内源性,晚期为外源性。因此,

鱼类卵黄生成的2种途径并非绝对孤立,或许在特定条件满足后能够相互转化,相关研究仍在进行中。

Ca

的含量变化也能从一定程度上反映卵巢的发育水平,是分批产卵鱼类研究领域的组成部

分。处于繁殖期的雌鱼,肝脏内的肝细胞会在雌激素(主要是雌二醇)的作用下合成卵黄蛋白原

g

),该物质是卵黄蛋白的前体,是卵巢发育成熟的标志。鱼类卵黄蛋白原是一种钙结合高密度复合

蛋白,主要成分包括卵黄磷蛋白和高磷蛋白,磷含量约占1%,比例稳定,通过测定血清蛋白磷(SPP) 或血浆蛋白磷含量(PPP)可间接反映卵黄蛋白原变化情况[20,1]。王友慧等[22]在研究瓦氏黄颡鱼

时发现:S

PP

浓度变化情况与性腺成熟系数显著相关。卵黄蛋白原发生过程同

srr trawswiow-

时伴随着Ca2浓度变化,李朝军等[23]对大阪卿(CarawiMsaMratMSCMwieri)的研究表明,Ca2能促进 卵母细胞的发育,增强其吸收蛋白质的功能;1」113阳3-匚336〇3¥6等[21]证实高首鳄(Aci/iew

tom

«)体内的V

g

含量与血液中C

a

含量及性腺发育程度呈正相关。通常情况下,卵巢发育会优先动用

第4卷第6期徐钢春等:鱼类性腺发育及产卵类型研究进展

a

血液中的P、Ca,但是当血液中P、C含量不足时,骨骼中的P和

Ca

也能从血液被转移至性腺,成

为卵巢发育的营养基础[25]。进一步的研究还表明,血液中部分生化指标的含量不仅能反映鱼体的健康 状况,更在锝形目鱼类的性别鉴定上作用突出。锝形目鱼类是地球上最古老的物种之一,一生多次产 卵,生殖周期长,存在雌鱼性腺发育不同步的现象[26]。由于它们中的大多数都是保护物种,常规的手 术方法行不通,如何采用微创手段鉴定其性别成为了研究的热点前沿。齐茜等[27]通过实验发现,可以 从血清卵黄蛋白原和Ca2含量的差别中区分出卵黄生成时期小体锝(Aci/JCTwerrMt/iewM;;)的性别;张 涛等[28]对人工养殖西伯利亚锝(A.

包括

Ca2

、P在内的总计24个生化指标进行了测定,构建

起性别判定函数,经验证判定的精准度高达84%。相关的研究说明基于血液生化指标鉴定锝鱼类性别 是一条行之有效的手段,具有广阔的应用前景。1.4影响鱼类性腺发育的因素

鱼类的性腺发育受到自身激素水平的调节,此外环境因子也对鱼类的生殖活动产生影响。相关的基 础性研究工作已经开展,并取得了一定的数据资料和理论成果。1.4.1鱼类性类固醇激素的影响

鱼类的性类固醇激素是一种脂溶性甾体激素,主要功能在于调节促性腺激素(G

tH

)合成与释放,

维持鱼类最基本的性腺发育和排卵等生理活动,在更高层次上,它还可以参与、协调下丘脑一垂体一性 腺轴各因子发挥作用[29]。鱼类精巢分泌的雄激素主要包括睾酮(T)和11-酮基睾酮(ll-K1!&11^等[3°]证实11-K

T

T)。N

aga-

是硬骨鱼类中占具优势的雄性激素。此外,精巢中也有少量雌激素和孕激素存

E

在[31]。鱼类卵巢所产生的雌激素主要是雌二醇(E2)和雌酮(F1),以2活性为最强。卵巢分泌的孕

激素主要是孕酮(P)、17a-羟孕酮和17a,20-双羟孕酮,其中17a,20-双羟孕酮的活性最强。1.4.2环境因子的影响

诸多环境因子如气象水文因子(水温、光照)、水体理化因子(盐度、p

H

)、饵料及产卵基质等都

能对鱼类的生殖过程产生影响[3 2 ]。仅以光照为例:张培军[3 3 ]指出光照周期的变化能促使鱼类性腺发育

(Dicewrarc/iMiZaiTaa:)米取连续光照刺激,结 果发现其内分泌系统以及脑一垂体一性腺轴所有层次激素的释放、合成均受到影响;Bonnet等[35]发现

提前,甚至在非产卵期产卵;1^。丨111:^等[:4]对舌齿鲈

在虹鳟产卵时改变光照周期会阻碍卵母细胞发育,显著降低卵子的质量。

2鱼类的产卵类型

产卵类型是鱼类最重要的繁殖学特性之一,鱼类性腺发育水平的不同步,直接导致了产卵类型的差

异。因此,广义上看,它属于性腺发育的研究范畴之内。对鱼类产卵类型的深人调研有助于评估鱼类繁 殖力、判明生活史及确定繁殖对策,有助于后续人工繁殖的开展,有助于濒危鱼种的保护。随着时间的 推移和方法的推进,鱼类产卵类型的研究报道逐渐增多。2.1产卵类型的划分及依据

鱼类的繁殖通常具有繁殖周期,而有些鱼类的繁殖活动一年多次,产卵并不同步,这是千百万年的 进化机制使然。国外学者在这一领域涉足较早,主要的研究对象是生活在大洋中的洄游鱼类。

M

efteH10]直截了当将产卵类型划分为一次和分批2种类型;沖1«1^36]则主张应详细划分为完全同步

e spawner

al spawner

型、分批同步型、分批非同步型等类型。并且,延伸开来还有一次性产卵类型、多次产卵类型、分次同 步型、分批产卵类型等不同说法。整体而言,国外学者对产卵类型划分标准没有定论,术语也并不统 一,常用M

ultipl

Fraction

等[3',8]。但是,经过对不同产卵类型鱼的实例研究,

硬骨鱼类卵

提出了部分阶段性假说。比如:有学者推测,分批产卵的鱼比一次性产卵鱼卵巢更小[39]

黄生成和卵母细胞的成熟,很大程度上受到促性腺激素调控[4)~42];卵巢中卵母细胞发育不同步导致了 产卵类型的差异[43],卵母细胞分批发育(包括性成熟雌体水化卵尺寸和频率分布)现象的存在,表明 当一批卵排出后,新一批次的卵也将成熟并被释放[44],不同发育期的卵母细胞大小呈连续性分布是分 批产卵鱼的典型模式[4 5 ]; —次产卵型的鱼类受到环境更严苛的约束,倾向于生活在环境温和的水

动物科学2017年3月

域[6],而分批产卵的积极意义在于,当环境发生剧烈动荡时,产卵后代不会因为一次突发性、偶然性 的自然灾难就变得全军覆没[7]。目前,国内学界对于鱼类产卵类型的划分有2种表述。第一种:将产 卵类型划分为一次型[8]、分批型[9]和连续型[30];根据鱼类的繁殖习性和卵巢的组织学特征,并结合繁 殖季节内性腺成熟系数(GSI)与卵径分布2个指标的峰值来区分[5),1]。第二种:将鱼类卵巢分为不同 步型、部分同步型以及完全同步型[32];划分依据的标准是性腺发育周期和卵子发生模式,侧重于卵巢 发育,针对的主体对象是卵巢。虽然角度存在不同,标准具有差异,但鱼类产卵类型的2种划分方法其 实是相互关联、彼此印证的,例如具有非同步型卵巢的鱼类,产卵类型往往又可归类为连续型[53]。实 际过程中,2种表述都很合理,可以共存。2.2分批产卵鱼类年繁殖力的估算

鱼类繁殖力又称怀卵量,是产卵前的雌鱼卵巢内的卵粒数。年繁殖力是以一年为周期进行统计的怀 卵量总和,其数值直接关系到种群的补充和延续,是进行渔业种群评估的关键参数[51]。分批产卵鱼的 年繁殖力评价远比一次性产卵鱼类复杂,原因在于其年繁殖力等于分批繁殖力和繁殖批次数二者之积, 计算时需通盘考虑[53]。评测分批繁殖力的方法共有3种,分别是:(1)计算繁殖初期卵巢中所有卵黄 卵的量;()计算卵径频率分布中最接近于繁殖的那部分峰值卵的数目;(3)计算水化卵巢中所有水化 卵的数目。第一种方法仍是按照不分批繁殖鱼类的模式,

Hunter等[53]指出这对评估分批繁殖鱼类意义

不大,计算结果远比真实值小。第二种方法结果可靠,并在此基础上演化出更成熟的核移位法[5],但 过程耗时,区分相邻两峰之间的交互重叠比较困难。目前,水化卵法是评估分批繁殖力最为行之有效的 手段,应用最广[56]。繁殖批次数是计算年繁殖力的另一项必备指标,很难计量,往往借助于繁殖频率 (每批次繁殖所需时间)间接计算得到。关于繁殖频率,许多学者都提出了自己的一套计算方法,但后 来证明有些方法并不实用。通过卵径分布来估算繁殖频率是最早的方法,已被实验证明缺乏科学性和准 确度[57]。直接饲养观测鱼体是最直接的手段[58],然而不仅过程耗时,实验结果也并不能反映自然水体 的真实状况。现阶段,评估繁殖频率最常用的方法依然是产后滤泡法[59],该方法自创立至今已逾30a, 为各大洋鱼类所普遍采用,合计包含50多个鱼类种群[60]。功地评估了台湾东部水域平鳍旗鱼((W

[62]发现刺鱼(G

em

o^iorM

助水化卵法和产后滤泡法成

的分批繁殖力和繁殖频率,计算出其种

oot-

舛e

rwd

群的年繁殖力。进一步的研究还发现,鱼类分批产卵可能有助于增加繁殖的总产卵重量。例如,W

ton

arfro

对ews acM

kato

)的年产卵重量是它们自身重量的2〜3倍,而银汉鱼

(M心a a

W

^w)甚至超过其自重6〜8倍[63],不过这一结论还需要更多样本的验证。

3展望

综上所述,在已有的文献中,鱼类性腺发育方面的研究更侧重于卵巢发育,取得的成果显著。未来

随着高技术的进一步应用(包括分子生物学、电子显微镜技术、酶联免疫法等),鱼类卵巢发育的描述 会日趋精细,基于分子水平阐释卵巢发育过程、探究发育机理的相关报道会逐渐增多。针对于鱼类产卵 类型方面的研究,近年来也呈明显上升趋势。分批产卵的鱼类除了少数淡水鱼如稀有鮑鲫(G

rW

Oo

;^-

rarw)等,其它绝大多数都是海洋洄游性鱼类如小黄鱼(P5eM〇5d

TwIer

am

a

〇Z

a

“W)、半滑舌鳎

(Cynoglossu e

)等。其中,锝形目鱼类是分批产卵鱼类中非常珍贵的类型,多是保护动物。

以前鉴定锝鱼性别采用的是手术方法,虽然准确率高,但对鱼体有损伤。最新的研究表明,利用血液生 化指标同样可以鉴定锝形目鱼类的性别,并且已经在部分锝鱼身上得到成功应用[27,8]。未来,随着研 究的深层次开展,准确率的进一步提高,这种方法的应用前景将非常广阔。鱼类的分批产卵主要是卵巢 发育的不同步造成的,自然界中,分批产卵鱼对环境的适应能力更好,子代不会因为一次突发性的环境 灾难就全军覆没[38];然而在生产环节,鱼类的这种分批产卵属性却成为人工繁殖的极大障碍。为了克 服这个难题,科研人员从影响鱼类性腺发育的相关因素人手,综合运用各种手段,包括使用激素缓释制 剂[61]、控制温度、控制光照周期、营养强化、模拟生态条件[65]等,诱导分批产卵鱼类尽可能一次性同 步产卵。目前,已经有部分分批产卵鱼的人工繁殖取得突破,随着技术的成熟以及经验的积累,相信今

第4卷第6期徐钢春等:鱼类性腺发育及产卵类型研究进展• 47 •

后这样的成功案例会越来越多。

[参考文献]

[]施琅芳,尹伊伟.鲢鱼性腺周年变化的研究[].水生生物集刊,1964,5 (): 77〜94.[2]盛晓洒.嘉陵江瓦氏黄颡鱼雌性发育周年变化的研究[D].重庆:西南大学,2008.[]张小雪,董元凯.黄鳝精巢显微和超显微结构的研究[].水利渔业,1994, (): 9〜丄丄.

Nagahama Y, Adachi S. Identification of maturation in inducting steroid in a teleost, the amago salmon

[J]. Development Biology, 1985, 109: 428〜435.[5] Billard R. Spematogenesis and spermatology of some teleost fish species [J]. Reproduction Nutrition Development, 1986, 26: 877〜

[4]

920.

[]陈永,魏刚,黄林.性成熟鲇精巢发育的显微结构研究[].西南农业大学学报,1996 , 18 (4): 375〜378.[7]孟庆闻,苏锦祥,李婉端.鱼类比较解剖学[M].上海:上海科学技术出版社,1987: 263〜265.[]刘筠.中国养殖鱼类繁殖生理学[M].北京:中国农业出版社,1993: 20〜73.

[]张贤芳,张耀光,王志坚.硬骨鱼类的卵巢发育和卵子发生研究综述湖南师范学院学报,2006, 19 (): 70〜74.[10] MeneuBA. K Bonpocyo r〇A〇B〇MnHKAe KocTHCTHXbi X Pbi5 [J]. H3bAH C'C'C'P Bu,〇a , 1939 , 3: 389〜420.[1] 代丽.稀有鮑鲫原始生殖细胞的起源、迁移和分化及卵巢发育和卵子发生研究[D].重庆:西南大学,2013.

Azevedo C. Development and ultrastructural autoradiographic studies of nucleolus-like

ost (Xiphorus heneri)[]. C'ell and Tissue Research, 1984, 238: 121 〜128.[13] Yamamoto K, Got a I. An electron microscope study of the formation of the yolk globule in the oocyte of zebrafish, Brachydanio re-

Xo [J]. Bulletin of the Faculty of Fisheries Hokkaido University, 1967, 17: 165〜174.

[12]

[4] 杨桂枝,张耀光.南方鲶卵黄发生的研究[].四川解剖学杂志,2000, 8 (): 136〜144.[5] 朱洗,王幽兰.金鱼和鳊色卵球成熟的细胞学研究[].实验生物学报,1962, 8 (): 1〜34.

[6] 牟振波,徐革锋,杨双英.细鳞鱼卵巢滤泡细胞的发育及功能[].中国水产科学,2008, 15 (): 167〜171.[7] 施琅芳.鱼类性腺发育研究新进展[].水生生物学报,1988, 12 (): 248〜258.[18]

bodies

Kobayashi D, Tanaka M , Fukada S, fa/. Steroidogenesis in the ovarian follicles of the medaka during viesis and oocyte maturation [J]. Zoological Science, 1996 , 13: 921 〜927.[9]蒲德永.大眼鑛的卵子发生及早期发育[D].重庆:西南大学,2007.[20] Rinchard J , Kestemont P, Heine R. Comparative study of reproductive biology in single and multiple-spawner cy

steroid and plasma protein phosphorus concentrations [J]. Journal of Fish Biology, 1997 , 50: 169〜180.[21] ManoY, Lipman F. Characteristics of phosphoproteins(phosvitins) from a variety of fish roes [J]. Journal of Biological Chemistry,

1966, 241: 3822〜3833.

[2] 王友慧,李云.瓦氏黄颡鱼血清蛋白磷与性腺发育关系的研究[].水产科学,2004, 10 (3): 5〜8.

[3] 李朝军,刘荣臻,王浩,等.大阪鲫卵黄蛋白原和钙离子关系的初步研究[].水产学报,1993 , 17 (): 297〜303.[24] Linares-C'asenave J ,

Kroll K J , Van Eenennaam J P, et al Effect of ovarian stage on plasma vitellogenin and calcium in cultured

white sturgeon [J]. Aquaculture, 2003,221: 645〜656.

[5]高晓阳,刘利平,蒋天宝,等.鲤鱼脑垂体和HCG诱导雌性河鳗性腺成熟过程中钙磷变化的初步研究[].湖南师范大学自然科

学学报,2011, 34 () : 77〜81.[26] Amiri B M,

Maeba Y M, HaraA, t a1. Ovarian development and serum sex steroid and vitellogenin profiles in the female cultured sturgeon hybrid, the bester [J]. Journal of Fish Biology, 1996 , 48: 1164〜1178.

[7] 齐茜,曲秋芝,张颖,等.小体鲟血清卵黄蛋白原和Ca2+浓度与卵巢发育的关[].中国水产科学,2009 , 16 (): 967〜974.

[8] 张涛,章龙珍,赵峰,等.基于血液生化指标判别分析西伯利亚鲟性别及卵巢发育时期[].中国水产科学,2007, 14 (2): 236〜

243.

[9] 姚捃.红鲫繁殖周期与内分泌生理功能研究[D].青岛:中国海洋大学,2008.

Nagahama Y, KagawaH, Young G. Cellular sources of sex steroids in teleost g()nads[J]. Canadian Journal of Fisheries andAquatic

Sciences, 1982,39: 56〜64.

[1] 楼允东.组织胚胎学[M].北京:中国农业出版社,1999: 126〜136.

[30]

[2] 温海深,林浩然.环境因子对硬骨鱼类性腺发育成熟及其排卵和产卵的调控[].应用生态学报,2001,12(1): 151〜155.[3] 张培军.海水鱼类繁殖发育和养殖生物学[M].济南:山东科学技术出版社,1999.

R, Ideal B, Silvia Z, t a/. Long-term exposure to continuous light inhibits precocity in

chus LaXraj:,L.): hormonal aspects JJ]. (^eneal andComparative Endocrinology, 2005, 140 : 116〜125.[35] Bonnet E, Montfort J, Esquerre D, et al Effect of photoperiodmanipulation on rainbow trout egg quality:

a genomic study [J]. Aquaculture, 2007, 268: 13〜22.

[34]

Lucinda European

• 48 •动物科学2017年3月

Nikolsky G V. On some zonal features in the process of fish production in waterbodies of different latitudes [J]. Ber Dtsch WissKomm Meeresforsch,丄970, 2丄:27〜32.[37] (Gile W F. Fecundity and spawning frequency of caged bluntnose minnow-fractional spawners [J]. Transactions of the American Fish­

eries Society,丄983,丄丄2: 398〜402.[38] ConverD C. Field and laboratory assistant of patterns in fecundity of a multiple spawning fish: the Atlantic silverside Menidia

menidia[J]. Fishery Bulletin,丄985, 83 (3): 33 丄〜34丄.

[39] WoottonRJ. Energy costs of egg production and environmental determinants of fecundity in teleost fishes[J]. Symposium of the Zo­

ological Society of London,丄979, 44:丄33〜丄59.[40] Fostier A, Jalabert B, Billard R, na/. The gonadal steroids in part A: Endocrine tissues and

[3 6]

丄983, 9: 277〜372.[4丄]

hormone

(}()etz F W. Hormonal control of oocyte final maturation and ovulation in fishes []. FishPhysiology,丄[42] Nagahama Y. The functional morphology of teleost gonads in part A: Endocrine tissues and hormones []. FishPhysiology,丄983,

9: 223~275.

[43] Jacquws R, Patrick K. Liver Changes related to oocyte growth in roach,

a single spawner fish,and in bleak and white bream,two

multiple spawner fish [J] International Review of Hydrobiology, 2003,88: 68〜76.[44] Hernandez-Herrera A, Ramirez-Rodriguez M, Muhlia-Melo A. Batch fecundity and spawning frequency of sailfish (Istiophorus

off the Pacific coast of Mexico [J]. Pacific Science, 2000,54:丄89〜丄94.piatypterus)[45] Macchi G H, Acha E M. Spawning frequency and batch fecundity of Brazilian menhaden, Brevoortia aurea,in Rio de la Plata estu­

ary of Argentina Uruguay [J]. Fishery Bulletin, 2000, 98: 283〜289.[46] Nikolsky G V. On some zonal features in the process of fish production in waterbodies of different latitudes []. Ber Dtsch Wiss

Komm Meeresforsch,丄970, 2丄:27〜32.[47] Cambray JA,Bruton M. The reproductive strategy of a barb, Barbus anoplus (Pisces: Cyprinidae),colonizing a man-made

South Africa [J]. Journal of the Zoological Society of London,丄984, 204:丄43〜丄68.

[8]孙帼英.大银鱼卵巢的成熟期和产卵类型[].水产学报,丄985,(4): 363〜368.[49]王剑伟.稀有鉤鲫的繁殖生物学[].水生生物学报,丄992,丄6 (2):丄65〜丄75.

[0]温海深,王亮,毛玉泽,等.鲇鱼产卵类型的研究[].哲里木畜牧学院学报,丄998,8 (): 9〜丄4.[丄]吴佩秋.小黄鱼不同产卵类型卵巢成熟期的组织学观察[].水产学报,丄98丄,5 (2):丄6丄〜丄69.[2]林浩然.鱼类生理学[M].广州:广东教育出版社,丄999:丄85〜丄88.[53] Hunter J R, Lo N C,

Leong R J. An egg production method for estimating spawning biomass of pelagic fish: application to the northern anchovy, Engrauis mordax []. National Marine Fisheries Service,丄985,36: 67〜77.[54] McGrawJ B, Caswell H. Estimation of individual fitness from life-history data []. The American Naturalist,丄996,丄47: 47〜64.[55] (j-anias K, Somarakis S, Machias A, t ai. Pattern of oocyte development and batch fecundity in the Mediterranean sardine [J].

Fisheries Research, 2004, 67:丄3〜23.

[6]王腾,黄丹,孙广文,等.鱼类分批繁殖力和繁殖频率的研究进展[].动物学杂志,20丄3, 48 ():丄43〜丄49.[57] Hunter J

2丄5〜230.

[8]沈建忠.中华鳑鮍只o

R, Leong R. The spawning energetics of female northern anchovy, [J]. Fishery Bulletin,丄98丄,79:

dus inns繁殖习性的初步观察[].华中农业大学学报,2000,丄9 (5): 494〜496.[59] Hunter J R, GolbergS R. Spawning incidence and batch fecundity in north anchovy, [J]. Fishery Bulletin,

丄980,77: 64丄〜645.[60] [6丄]

GaniasK. Thirty

20丄2,丄丄8: 63〜74.

years of using the postovulatory follicles method: Overview, problems and alternatives

Chiang W C,Sun C L, Yeh S Z. b al.Spawning frequency and batch fecundity of the sailfish

dae) in waters off eastern Taiwan [J]. Zoological Studies, 2006, 45: 483〜490.[62] WoottonRJ. Fecundity of the three-seined stickleback,GaSroSeu aueaw []. Journal of FishBiology,丄 973,5 : 683 〜688.[63] Hubbs C. The diel reproductive pattern and fecundity of Mnda aden []. American Society of Ichthyologists and Herpetologists,

丄976, 2: 386〜388.

[4] 温海深,林浩然.激素缓释制剂诱导海水养殖鱼类性发育成熟与生殖行为的研究进展[].中国水产科学,2002,9 (2):丄77〜

丄82.

[5] 区又君,李加儿,陈福华.驼背鲈引种驯养及人工诱导性腺发育和繁殖[].湛江海洋大学学报,丄999 ,丄9 (): 20〜23.

[编辑]余文斌

(Istiopho

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