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发酵苹果汁对腹泻小鼠稀便率和小肠组织结构的影响

来源:独旅网
山西农业科学2019,47(11):2042-2045doi:10.3969/j.issn.1002-2481.2019.11.39JournalofShanxiAgriculturalSciences发酵苹果汁对腹泻小鼠稀便率和小肠组织结构的影响

婧1袁2袁李

瑞2袁王吉祥2袁宫泽恩2袁孙子龙2袁王晓闻1(1.山西农业大学食品科学与工程学院,山西太谷030801;2.山西农业大学动物科技学院,山西太谷030801)

摘要院研究采用苏木精-伊红(HE)染色法,以45只3周龄ICR雄性小鼠为试验对象,随机分成5组,每组9只,利用头孢曲松钠溶液构建腹泻模型,以无菌生理盐水灌胃为空白对照,通过未发酵苹果汁、益生菌和发酵苹果汁灌胃进行治疗,探讨发酵苹果汁对腹泻小鼠肠道组织结构的影响,为进一步深入研究发酵苹果汁的功能提供依与其他4个组相比,使小鼠小肠绒毛的长度增加。发酵据。结果表明,发酵苹果汁显著降低了腹泻小鼠的稀便率,加强肠道屏障的防御功能。苹果汁可以有效地维持小鼠的肠道健康,缓解腹泻对小鼠肠道黏膜的损害,腹泻;肠道关键词院发酵苹果汁;中图分类号院S859.83

文献标识码院A

文章编号院1002-2481(2019)11-2042-04

EffectofFermentedAppleJuiceontheRateofLooseStooland

SmallIntestineTissueStructureinDiarrheaMice

2WANGJing1,,LIRui2,WANGJixiang2,GONGZeen2,SUNZilong2,WANGXiaowen1ShanxiAgriculturalUniversity,Taigu030801,China;(1.CollegeofFoodScienceandEngineering,

2.CollegeofAnimalScienceandVeterinaryMedicine,ShanxiAgriculturalUniversity,Taigu030801,China)

Abstract:Toexploretheeffectoffermentedapplejuiceontheintestinaltissuestructureofdiarrheamice,andprovideabasisforfurtherstudyonthefunctionoffermentedapplejuice,thisstudyusedhematoxylin-eosin(HE)stainingmethodtakingtreat3-week-oldICRmalemiceasexperimentalsubjects,whichwererandomlydividedinto5groupsof9each.Thediarrheamodelwasconstructedbyusingceftriaxonesodiumsolution.Theblankcontrolwasadministeredwithsterilesalineandwastreatedbyinfusingunfermentedapplejuice,probioticsandfermentedapplejuice.Theresultsshowedthatcomparedwiththeotherfourgroups,fermentedapplejuicesignificantlyreducedtheloosestoolsrateofdiarrheamiceandincreasedthelengthofintestinalvilli.Fermentedapplejuicecaneffectivelymaintaintheintestinalhealthofmice,relievethedamageofdiarrheaontheintestinalmucosaofmiceandstrengthenthedefensefunctionoftheintestinalbarrie.

Keywords:fermentedapplejuice;diarrhea;intestine

而且在各腹泻是临床上经常出现的一种病症,

若不及时对其采取种动物养殖业中也会频繁发生,

从而对措施进行诊治,将会造成动物的大批死亡,各大养殖场造成无法估量的经济损失[1]。当机体处于健康状态时,肠黏膜能够阻挡细菌和病毒等穿这些有害过;但是当肠道黏膜的防御作用下降时,

腹泻与的物质就会透过黏膜诱发各种疾病。因此,抗生素相关肠黏膜防御之间有着十分密切的关系。

从而导致机性腹泻是由于滥用或过量使用抗生素,

是临床上使用抗菌类药体的抗生素耐药性增加[2],

尤其是氨基物过程中所发生的最为多见的副作用,青霉素类、头孢菌素类等相对广谱的抗生素[3-4]。

益生菌的使用是调节肠道菌群的一种治疗措

收稿日期院2019-09-10

(201701D121102)基金项目院山西省应用基础研究项目作者简介院:王

施,可以帮助恢复肠道微生物群并重建肠道内稳态[5-6]。URDACI等[7]研究表明,用枯草芽孢杆菌或植

(Lipopolysaccha-物乳杆菌处理可以减少由脂多糖

益生菌是有利于宿主健康的rides,PS)诱导的腹泻。

能够促活的微生物,其存在于健康人类的肠道中,提高机体免疫力,维持肠进营养物质的消化吸收,

道菌群结构平衡,已被用于调节胃肠道微生物群和

治疗各种肠道疾病,并且具有极好的安全效益比。苹果是世界上最受欢迎的水OZDAL等[8]研究表明,

能够通过增加果之一,其含有丰富的多酚和纤维,干酪乳杆菌有益细菌来调节微生物。有研究表明,

同时提对于保护断奶仔猪的肠道具有很好的效果,高了淋巴细胞的数目,增强了机体的免疫机能[9-10]。

婧(1994-),女,山西运城人,在读硕士,研究方向:食品科学与环境兽医学。王晓闻、孙子龙为通信作者。

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王婧等:发酵苹果汁对腹泻小鼠稀便率和小肠组织结构的影响

本研究利用1%的植物乳杆菌在pH值为7.0的条件下发酵新鲜苹果汁24h得到的发酵苹果汁处理腹泻小鼠,通过统计各组小鼠的稀便率以及对

于小肠各段进行组织病理学观察,

探讨发酵苹果汁对腹泻小鼠肠黏膜的作用和对小肠结构的完整性的影响,旨在为进一步深入研究发酵苹果汁的功能

提供依据。

1

材料和方法

1.1试验材料1.1.1

材料

供试苹果为红富士,

购自山西省晋中市山西农业大学农贸市场;

植物乳杆菌CICC21809,购自中国工业微生物菌种保藏中心;

供试动物为健康的SPF级ICR小鼠45只,3周龄、雄性,

由山西医科大学提供。1.1.2试剂头孢曲松钠,购自北京索莱宝有限

公司。1.2试验方法

1.2.1

发酵苹果汁的制备将低温保藏的菌种活

化后,在37℃培养箱中放置24h,使菌液浓度达约1.0×107cfu/mL。

新鲜苹果汁的pH值在4.0左右,通过食用碱(Na2CO3)调节苹果汁pH值到6.5,121℃

高压灭菌10min;待果汁冷却后,在超净工作台上进行分装,根据不同发酵条件将其接种到50mL果汁中,接种后的苹果汁放置在37℃恒温箱内进行

发酵培养。1.2.2

乳酸菌发酵液的制备

将乳酸菌菌种活化后,接种于乳酸细菌发酵培养基(MRS)中,37℃培养24h,使菌液浓度达约1.0×107cfu/mL。1.2.3

动物分组及给药将45只小鼠适应性饲养

7d后,随机分为5个组(对照组、模型组、未发酵苹果汁组、发酵苹果汁组和乳酸菌组),每天对各组小鼠进行2次灌胃,第1次是在9:00,其中,

对照组每只小鼠灌胃0.3mL的无菌生理盐水,

模型组、未发酵苹果汁组、发酵苹果汁组和乳酸菌组每只小鼠

各灌胃等量的头孢曲松钠溶液。第2次是在4h后,将各组每只小鼠单独放在一个鼠笼里,

对照组和模型组每只小鼠灌胃0.3mL的无菌生理盐水,未发酵苹果汁组给予等量的新鲜苹果汁,发酵苹果汁组给予等量的发酵苹果汁,乳酸菌组灌胃等量的MRS菌液;之后观察2h,期间记录各组小鼠的稀便情况和正常的小鼠数量,并进行统计。第8天将全部小鼠脱颈处死,并无菌收集各个小鼠的十二指

肠、空肠和回肠,置于4%多聚甲醛中固定48h,期

间换一次固定液,保存于75%的乙醇中。1.3测定项目及方法

1.3.1

稀便率测定将各组的每只小鼠分别放置

在一个鼠笼里,2h内统计每只小鼠的总排便数和所排稀便数,计算稀便率。

稀便率=2h内所排稀便数/每只小鼠总排便数×100%(1)

1.3.2

肠道组织形态学观察根据方磊涵等[11]的

方法,无菌采集十二指肠、空肠和回肠,沿横截面横切成适当大小,生理盐水冲洗后固定,

进行脱水、透明、浸蜡和石蜡包埋流程,使用切片机切成5μm厚的连续切片,挑选出完整的组织烘干后用于HE

染色。染色时,先对切片进行二甲苯脱蜡,用梯度乙醇浸泡,再用苏木精染色5min,自来水冲洗1min后,利用1%的盐酸-乙醇溶液来分色,再用自来水冲洗5min;用梯度乙醇逐步脱水;在伊红染液中浸入30s后快速倒掉染液;再用高浓度的乙醇进行脱

水,在二甲苯中透明20min后,中性树胶封片,放置过夜后在显微镜下观察并对完整的组织进行拍照。1.4

数据处理

试验数据利用GraphPadPrism6.0软件进行统计分析,稀便率采用One-wayANOVA进行单因素方差分析。

2

结果与分析

2.1

不同处理小鼠稀便率的变化

从图1可以看出,在第3天,对照组及各试验

组的小鼠与模型组相比均无显著性变化(P>0.05);第4天时,对照组、乳酸菌组和发酵苹果汁组的小

鼠与模型组相比,稀便率均显著下降(P<0.05);与发酵苹果汁组相比,未发酵苹果汁组稀便率显著上升(P<0.05);第5~7天,各组小鼠的稀便率均无

显著性变化(P>0.05)。

窑2043窑

山西农业科学2019年第47卷第11期

2.2不同处理小鼠十二指肠的形态学观察结果

从图2可以看出,各试验组小鼠肠道具有明显

的变化,在低倍镜下,对照组、未发酵苹果汁和发酵苹果汁组的十二指肠绒毛呈长指状和弯曲状,结构完整,绒毛与隐窝界限分明,无明显病理变化;而模型组出现肠绒毛的断裂、漂浮,隐窝和肠绒毛杂乱无序。

2.3

不同处理小鼠空肠的形态学观察结果图3结果显示,对照组、未发酵苹果汁组、

益生菌组和发酵苹果汁组的肠绒毛排列整齐,与隐窝界限分明,无明显病理变化,

且发酵苹果汁组的绒毛较长;模型组观察到肠绒毛的断裂缩短。

2.4

不同处理小鼠回肠的形态学观察结果图4结果显示,对照组、益生菌组、发酵苹果汁组的肠绒毛和隐窝排列紧密整齐,结构相对完整;模型组和未发酵果汁组能够看到明显的绒毛断裂和缩短。

窑2044窑

3结论与讨论

抗生素诱导的小鼠腹泻是构建动物腹泻模型

最为常用的方法,通常都是小鼠灌胃7d左右即可形成。

仔猪腹泻是目前养殖场中常见的问题,吴苏君等[12]研究表明,

仔猪腹泻与肠道菌群变化相关。绒毛是小肠最重要的黏膜组成部分,

机体的各种消化吸收也是利用肠绒毛进行的[13]。因此,肠绒毛对于

小肠的吸收功能具有最直接的作用。绒毛越长,说明消化吸收越强。隐窝是绒毛基部的上皮内陷形成的管状结构[14],隐窝深度则反映了细胞的生成率和小肠的更新速度,更新过程减慢,就会导致隐窝变

浅,表明成熟细胞较多,

吸收消化能力增强[15]。有研究证明,枯草芽孢杆菌能够增加成年的雄性鸡中的回肠绒毛长度,从而提高饲料转化率[16]。

CHICHLOWSKI等[17]用屎肠球菌处理肉鸡,结果显示,空肠和回肠的绒毛变长。

当给动物喂乳杆菌后,黏膜出现了更多的褶皱,

绒毛变长,增加了饲料的利用率[18]。郭元晟等[19]试验结果表明,

乳酸杆菌对于肉鸡肠绒毛的增长具有促进作用。魏俊淑[20]研究表明,植物乳杆菌能够减缓葡聚糖硫酸钠诱导形成的结肠炎小鼠的肠道组织学损坏。本试验结果表明,发酵苹果汁能增加肠绒毛高度,

促进小鼠肠黏膜的发育。小鼠腹泻后,肠道中的水分会变多,会促进粪便的软化,对肠黏膜也会产生一定的刺激,

从而造成黏膜损害。小鼠灌服发酵苹果汁后,

其肠绒毛损伤较轻,说明发酵苹果汁能够减轻腹泻对肠黏膜的刺激,对肠绒毛的完整性起到一定的保护作用。

本研究表明,与其他试验组相比,发酵苹果汁能够显著降低腹泻小鼠的稀便率,

并且能够使腹泻模型小鼠的肠绒毛提高,说明发酵苹果汁在一定程

王婧等:发酵苹果汁对腹泻小鼠稀便率和小肠组织结构的影响

滕可导,等.干酪乳杆菌对断奶仔猪十二指肠[10]张魏伟,王安如,

发育的组织学影响[J].中国农业大学学报,2015,20(3):114-120.

王振,等.绞股蓝多糖对断奶仔猪肠道微生物[11]方磊涵,毕玉霞,

区系的影响[J].河南农业科学,2017,46(12):122-125,138.[12]吴苏君,罗惠娣,赵娟.应用实时荧光定量PCR法检测仔猪肠

道内乳酸杆菌和双歧杆菌[J].山西农业科学,2019,47(8):1477-1480.

[13]VARELVH,ROBINSONIM,PONDWG.Effectofdietarycop-persulfate,AureoSP250,oronureolyticbacteriafoundinthepiglargeintestinal[J].AppliedandEnvironmentalMicrobiology,1987,53(9):2009-2012.

[14]韩正康.家畜营养生理学[M].北京:中国农业出版社,1991.[15]成令忠.组织学[M].2版.北京:人民卫生出版社,1994.[16]SAMANYAM,YAMAUCHIKE.Histologicalalterationsofin-testinalvilliinchickensfeddriedBacillussubtilisvarnatto[J].ComparativeBiochemistryandPhysiologyPartA:Molecular&In-tegrativePhysiology,2002,133(1):95-104.

[17]CHICHLOWSKIM,CROOMWJ,EDENSFW,etal.Microarchi-tectureandspatialrelationshipbetweenbacteriaandileal,cecal,andcolonicepitheliuminchicksfedadirect-fedmicrobial,pri-malacandsalinomycin1121-1132.

[18]EDENSFW,PARKHURSTCR,CASASIA,etal.Principlesof

exovocompetitiveexclusionandinovoadministrationofLacto原bacillusreuteri[J].PoultryScience,1997,76(1):179-196.史彬林,等.发酵乳酸杆菌对肉鸡小肠绒毛形[19]郭元晟,闫素梅,

态的影响[J].动物营养学报,2011,23(7):1194-1200.[20]魏俊淑.植物乳杆菌调节小鼠肠道菌群预防DSS诱导结肠炎

的研究[D].兰州:兰州大学,2018.

[J].PoultryScience,2007,86(6):

增加肠道黏液度上能够保护肠黏膜,促进其生长,从而保护肠道。屏障的防御功能,减轻肠黏膜损伤,

参考文献院

周艺.规模养殖场猪群腹泻病的症状与防治措施[J].中[1]龚朝霞,

国动物保健,2014,16(6):30-31.

[2]YINJ,ZHANGXX,WUB,etal.Metagenomicinsightsintotetra-cyclineeffectsonmicrobialcommunityandantibioticresistanceofmousegut[J].Ecotoxicology,2015,24(10):2125-2132.

[3]MCFARLANDLV.Antibiotic-associateddiarrhea:epidemiology,

trendsandtreatment[J].FutureMicrobiol,2008,3(5):563-578.[4]LINGZ,LIUX,JIAX,etal.Impactsofinfectionwithdifferenttoxi-genicClostridiumdifficilestrainsonfecalmicrobiotainchildren[J].Sci.Rep.,2014,4:7485.

[5]MCFARLANDLV.Meta-analysisofprobioticsforthepreventionof

antibioticassociateddiarrheaandthetreatmentofClostridiumdiffi原ciledisease[J].Am.J.Gastroenterol,2006,101(4):812-822.[6]MCFARLANDLV.Evidence-basedreviewofprobioticsforantibi-otic-associateddiarrheaandClostridiumdifficileinfections[J].Anaerobe,2009,15(6):274-280.

[7]URDACIMC,LEFEVREM,LAFFORGUEG,etal.Antidiarrheal

actionofbacillussubtilisCU1CNCMI-2745andlactobacillusplantarumCNCMI-4547inmice[J].FrontMicrobiol,2018,9:1537.

[8]OZDALT,SELADA,XIAOJ,etal.Thereciprocalinteractionsbe-tweenpolyphenolsandgutmicrobiotaandeffectsonbioaccessibility[J].Nutrients,2016,8(2):78.

周宁聪,等.干酪乳杆菌对断奶仔猪回肠黏膜[9]王齐桓,王安如,

结构及上皮内淋巴细胞数量的影响[J].中国兽医杂志,2016,52(2):34-37.

渊上接第2033页冤

lenceofentomopathogenicfungiagainstBemisiatabacibiotypeB(Hemiptera:Aleyrodidae)andtheirconidialproductionusingsolidsubstratefermentation209-218.

李新凤,等.玫烟色棒束孢IF-1106菌株对烟粉虱[15]田晶,梁丽,

的致病力[J].山西农业科学,2013,41(7):728-731.

刁红亮,等.玫烟色棒束孢对烟粉虱致病的时[16]田晶,田浩楷,

间-剂量-死亡率模型分析[J].河南农业科学,2017,46(1):70-75.

付淑慧,等.玫烟色棒束孢与球孢白僵菌对桃蚜致[17]孟豪,田晶,

病力对比[J].植物保护学报,2014,41(6):718-722.

[18]TIANJ,DIAOHL,LIANGL,etal.PathogenicityofIsariafu原

mosoroseatoBemisiatabaci,withsomeobservationsonthefungal

[J].BiologicalControl,2013,66(3):

infectionprocessandhostimmuneresponse[J].JournalofInverte-bratePathology,2015,130:147-153.

刁红亮,等.生防菌玫烟色棒束孢IF-1106对[19]韩志慧,邢培翔,

(自然科学梨小食心虫杀虫活性的测定[J].山西农业大学学报版),2018,38(7):17-22.

[20]孟豪.玫烟色棒束孢IF-1106杀虫谱测定及与球孢白僵菌的

致病力对比[D].太谷:山西农业大学,2015.

[21]王滨,曹娜,GHULAMALIBUGTI.玫烟色棒束孢对多种刺吸

式口器害虫防治潜力的室内评测[J].中国生物防治学报,2018,34(1):86-91.

赵玲玲,等.利用胡瓜新小绥螨携带玫烟色拟青[22]孙莉,张艳璇,

霉菌兼防茄子蚜虫和叶螨[J].中国农学通报,2015,31(20):91-96.

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